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FL3500多功能叶绿素荧光仪

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北京易科泰生态技术有限公司

捷克

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产品介绍

FL3500多功能叶绿素荧光仪

FL3500多功能叶绿素荧光仪是专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻,叶绿体或类囊体悬浮物,乃至叶片进行光合作用研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制,可控制测量样品的温度,并配备单翻转光(STF),内置多种可用户自行修改的测量程序,可进行目前国际上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头,内置3LED光源和1500 kHz/16 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs(快速版为1μs)。系统配置的光合放氧测量模块,使其可以对放氧复合物的状态转换做更深入研究。

FL3500多功能叶绿素荧光仪配备有4种测量室:标准版、快速版、叶夹版、水下版。主机为双通道设计,可同时连接任意两种测量室,大大扩展了叶绿素荧光测量的应用范围,可以对任何类型的植物样品进行叶绿素荧光测量。

应用领域:

· 植物光合特性和代谢紊乱筛选

· 生物和非生物胁迫的检测

· 植物抗胁迫能力或者易感性研究

· 代谢混乱研究

· 光合系统工作机理研究

· 受胁迫植物光合生理应对策略研究

典型样品:

· 蓝藻(蓝细菌)

· 绿藻

· 叶绿体悬浮物

· 类囊体悬浮物

· 植物碎片

功能特点:

· 具备双通道测量控制,可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用,各版本的测量头可互换使用

· 内置多种可用户自行修改的测量程序,涵盖目前国际上对于叶绿素荧光的各种一般性研究和深入机理研究

· 配备单翻转光(STF),可进行QA再氧化动力学、S状态转换等光合机理研究

· 配备高灵敏度检测器,可进行OJIP快速荧光动力学分析

· 可控制测量样品的温度并进行磁力搅拌

技术参数:

· 实验程序:叶绿素荧光诱导测量;PAM(脉冲调制)测量;OJIP快速荧光动力学测量;QA再氧化动力学;S状态转换;叶绿素荧光淬灭

  • 荧光参数:F0FmFvF0Fm’Fv’QY(II)NPQΦPSIIFv/FmFv’/Fm’RfdqNqPETR50多项叶绿素荧光参数与图像,OJIP曲线与F0FJFiFmFvVJViFm / F0Fv / F0Fv / FmM0AreaFix AreaSMSSNPhi_P0Psi_0Phi_E0Phi_D0Phi_PavABS / RCTR0 / RCET0 / RCDI0 / RC20多项相关参数

· 时间分辨率(采样频率):高灵敏度检测器,时间分辨率达4μs(快速版为1μs

· 控制单元:双通道通用高度精确性自动微处理器,可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用(无需另行购买控制单元)

· 测量单元类型:可选择在一台主机上配备两种测量单元同时工作,推荐叶夹版+标准版/快速版或叶夹版+水下版

1.标准版

2.快速版:时间分辨率在标准版的基础上提高到1 μs,可精确捕捉和描绘快速荧光瞬变过程,使得运用PAM技术对OIJP曲线和光闪荧光诱导的快速动力学测量更加准确高效,能够更好的计算各种相关参数。

3.叶夹版

专用的叶夹式测量单元,测量区域直径为12.7mm(0.5 inch)。叶夹式测量单元可以无损地夹持叶片进行测量,而且不会使叶片脱离其原来的微环境。全部所需的光源与检测器都内置在测量单元进行直接测量,避免了一般的荧光仪使用光纤造成检测光信号的衰减。

4.水下版

设计用来直接在水下测量诸如水下植物,珊瑚或者海藻等样品的叶绿素荧光。专用的水下探头配有用于水下操作的特殊支架,**测量深度为水下1m

· 测量光闪:标准为波长617nm的橙光或455nm的蓝光,光闪时间25μs

· 单翻转饱和光闪:标准光源为630nm的红光,光闪时间2050μs

· 持续光化学光:标准为630nm的红光或455nm的蓝光,**光强2500 μmol(photons)/m2.s

· 远红外光源(选配):用于激发光系统I,波长735nm

· 氧电极(选配):测量藻类的氧气释放

· 每组lED光源强度和时间可通关软件调控,同时光源可根据研究要求选配

· 温度控制:TR 2000温度调节器,控温范围070,精确度0.1

· 电磁搅拌:8mm×3mm标准磁力棒

· 样品试管:底面积10×10mm,容积4ml

· AD转换器:试管式为500 kHz/16bit

· FluorWin软件:定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示

典型应用:荧光诱导过程分析

产地:捷克

参考文献:

§ Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria, é Kiss, et al, 2013. Research for Food, Fuel and the Future

§ Excess Ca2+does not alleviate but increases the toxicity of Hg2+ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety

§ Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one

§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology

§ Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology

§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum

§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one

§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology

§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry

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